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ELISA KIT组成及试剂配制

更新时间:2009-11-30  |  点击率:2506

ELISA KIT组成及试剂配制

1.        酶联板:一块96

2.       标准品冻干品2瓶,每瓶临用前以样品稀释液稀释至1ml,盖好后静置10分钟以上,然后反复颠倒/搓动以助溶解,其浓度为1,600 pg/ml,将其稀释为400 pg/ml后,再做系列倍比稀释(注:不要直接在板中进行倍比稀释),分别稀释成400 pg/ml200 pg/ml100 pg/ml50 pg/ml25 pg/ml12.5 pg/ml6.25 pg/ml,样品稀释液直接作标准浓度0pg/ml,临用前15分钟内配制。如配制200 pg/ml标准品:取0.5ml (不要少于0.5ml ) 400 pg/ml的上述标准品加入含有0.5ml样品稀释液的Eppendorf管中,混匀即可,其余浓度以此类推。

3.        样品稀释液1×20ml

4.        检测稀释液A1×10ml
5.        检测稀释液B1×10ml
6.        检测溶液A1×120μl1:100临用前以检测稀释液A 1:100稀释,稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制100μl/,实际配制时应多配制0.1-0.2ml。如10μl检测溶液A990μl检测稀释液A的比例配制,轻轻混匀,在使用前一小时内配制。
7.        检测溶液B1×120μl/1:100临用前以检测稀释液B 1:100稀释。稀释方法同检测溶液A
8.        底物溶液1×10ml/瓶。
9.        浓洗涤液1×30ml/瓶,使用时每瓶用蒸馏水稀释25倍。
10.    终止液1×10ml/2N H2SO4
11.    覆膜5
12.    使用说明书:1 
自备物品
1.   酶标仪建议参考仪器使用说明提前预热
2.   微量加液器及吸头,EP
3.   蒸馏水或去离子水,全新滤纸
标本的采集及保存
1.        血清:全血标本请于室温放置2小时或4℃过夜后于1000 x g离心20分钟,取上清即可检测,或将标本放于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
2.        血浆:可用EDTA或肝素作为抗凝剂,标本采集后30分钟内于2 - 8° C 1000 x g离心15分钟,或将标本放于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
3.        其它生物标本:请1000 x g离心20分钟,取上清即可检测,或将标本放于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
4.        样本处理:血清或血浆标本推荐稀释5,000倍。
注:以上标本置4℃保存应小于1周,-20℃或-80℃均应密封保存-20℃不应超过1个月,-80℃不应超过2个月;标本溶血会影响后检测结果,因此溶血标本不宜进行此项检测。 
操作步骤
实验开始前,各试剂均应平衡至室温试剂不能直接在37℃溶解;试剂或样品稀释时,均需混匀,混匀时尽量避免起泡。实验前应预测样品含量,如样品浓度过高时,应对样品进行稀释,以使稀释后的样品符合试剂盒的检测范围,计算时再乘以相应的稀释倍数
1.        加样:分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释液100μl,余孔分别加标准品或待测样品100μl,注意不要有气泡,加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀,酶标板加上盖或覆膜,37℃反应120分钟。为保证实验结果有效性,每次实验请使用新的标准品溶液。
2.        弃去液体,甩干,不用洗涤。每孔加检测溶液A工作液 100μl在使用前一小时内配制,酶标板加上覆膜, 37℃反应60分钟。
3.        温育60分钟后,弃去孔内液体,甩干,洗板3次,每次浸泡1-2分钟,大约400μl/每孔,甩干也可轻拍将孔内液体拍干
4.        每孔加检测溶液B工作液同检测A工作液 100μl,酶标板加上覆膜37℃反应60分钟。
5.        温育60分钟后,弃去孔内液体,甩干,洗板5次,每次浸泡1-2分钟,350μl/每孔,甩干也可轻拍将孔内液体拍干
6.        依序每孔加底物溶液90μl,酶标板加上覆膜37避光显色30分钟内,此时肉眼可见标准品的前3-4孔有明显的梯度兰色,后3-4孔梯度不明显,即可终止
7.       依序每孔加终止溶液50μl,终止反应,此时蓝色立转黄色。终止液的加入顺序应尽量与底物液的加入顺序相同。为了保证实验结果的准确性,底物反应时间到后应尽快加入终止液。
8.       用酶联仪在450nm波长依序测量各孔的光密度OD在加终止液后立即进行检测。
 
1. 试剂准备:所有试剂都必须在使用前达到室温,使用后请立即按照说明书要求保存试剂。 实验操作中请使用一次性的吸头,避免交叉污染。
2.  加样:加样或加试剂时,请注意在吸取标本 / 标准品,酶结合物或底物时,*个孔与后一个孔加样之间的时间间隔如果太大,将会导致不同的预孵育"时间,从而明显地影响到测量值的准确性及重复性。一次加样时间包括标准品及所有样品好控制在10分钟内,如标本数量多,推荐使用多道移液器加样。
3.   孵育:为防止样品蒸发,试验时将反应板放于铺有湿布的密闭盒内,酶标板加上盖或覆膜,以避免液体蒸发;洗板后应尽快进行下步操作,任何时侯都应避免酶标板处于干燥状态;同时应严格遵守给定的孵育时间和温度。
4.   洗涤:洗涤过程中反应孔中残留的洗涤液应在滤纸上充分拍干,勿将滤纸直接放入反应孔中吸水,同时要消除板底残留的液体和手指印,避免影响后的酶标仪读数。
5.  试剂配制:Detection ADetection B在使用前请手甩几下或少时离心处理,以使管壁或瓶盖的液体沉积到管底。标准品、检测溶液A工作液、检测溶液B工作液请依据所需的量配置使用,并使用相应的稀释液配制,不能混淆。请配置标准品及工作液,尽量不要微量配置如吸取检测溶液A时,一次不要小于10μl,以避免由于不准确稀释而造成的浓度误差;请勿重复使用已稀释过的标准品、检测溶液A工作液或检测溶液B工作液。
6.  反应时间的控制:加入底物后请定时观察反应孔的颜色变化比如,每隔10分钟),如颜色较深,请提前加入终止液终止反应,避免反应过强从而影响酶标仪光密度读数。
7.  底物:底物请避光保存,在储存和温育时避免强光直接照射。
    建议检测样品时均设双孔测定,以保证检测结果的准确性。
    如标本中待测物质含量过高,请先稀释后再测定,计算时请后乘以稀释倍数。
 
洗板方法
1. 手工洗板方法:吸去不可触及板壁或甩掉酶标板内的液体;在实验台上铺垫几层吸水纸,酶标板朝下用力拍几次;将推荐的洗涤缓冲液至少0.3ml注入孔内,浸泡1-2分钟,根据需要,重复此过程数次。
2. 自动洗板:如果有自动洗板机,应在熟练使用后再用到正式实验过程中。
 
计算
 以标准物的浓度为纵坐标对数坐标OD值为横坐标对数坐标,在对数坐标纸上绘出标准曲线。推荐使用专业制作曲线软件进行分析,如curve expert 1.3,根据样品的OD值由标准曲线查出相应的浓度,再乘以稀释倍数;或用标准物的浓度与OD值计算出标准曲线的回归方程式,将样品的OD值代入方程式,计算出样品浓度,再乘以稀释倍数,即为样品的实际浓度 
◇     注意事项:
收集标本前必须清楚要检测的成份是否足够稳定。对收集后当天进行检测的标本,储存在4℃备用,如有特殊原因需要周期收集标本,将标本及时分装后放在-20℃或-70℃条件下保存。避免反复冻融。标本2-8℃可保存48小时,-20℃可保存1个月。-70度可保存6个月。部分激素类标本需添加抑肽酶。
◇     液体类标本:
标本必须为液体,不含沉淀。包括血清、血浆、尿液、胸腹水、脑脊液、细胞培养上清、组织匀浆等。1ml的全血可得到0.5ml的血清或血浆。每个标本量收集体积=100ul×检测种类。取材前须向销售人员索要说明书。
◇     血清:
室温血液自然凝固10-20分钟后,离心20分钟左右2000-3000/。收集上清。如有沉淀形成,应再次离心。
◇     血浆:
应根据试剂盒的要求选择EDTA、柠檬酸钠或肝素作为抗凝剂,加入10v/v抗凝剂(0.1M柠檬酸钠或1% heparin 2.0%EDTA.Na2)混合10-20分钟后,离心20分钟左右2000-3000/。仔细收集上清。如有沉淀形成,应再次离心。
◇     尿液、胸腹水、脑脊液:
用无菌管收集。离心20分钟左右2000-3000/。仔细收集上清。如有沉淀形成,应再次离心。
◇     细胞培养上清:
测分泌性的成份时,用无菌管收集。离心20分钟左右2000-3000/。仔细收集上清。检测细胞内的成份时,用PBSPH7.2-7.4稀释细胞悬液,细胞浓度达到100/ml左右。通过反复冻融,以使细胞破坏并放出细胞内成份。离心20分钟左右2000-3000/。仔细收集上清。保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。
◇     组织标本:
切割标本后,称取重量。加入一定量的PBS,缓冲液中可加入1μg/L蛋白酶抑制剂或50U/mlAprotinin抑肽酶。用手工或匀浆器将标本匀浆充分。离心20分钟左右2000-3000/。仔细收集上清置于-20度或- 70度保存,如有必要,可以将样品浓缩干燥。分装后一份待检测,其余冷冻备用。